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核酸檢測(cè)情況

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核酸檢測(cè)情況

核酸檢測(cè)情況范文第1篇

【關(guān)鍵詞】 乙型肝炎病毒;核酸;血液篩查

核酸檢測(cè)(NAT)屬于新型血液病毒篩查檢測(cè)方法, 能夠直接檢測(cè)到血液中病原體的核酸[1]。核酸檢測(cè)在篩查獻(xiàn)血者乙型肝炎中具有重要作用, 本文選取無(wú)償獻(xiàn)血標(biāo)本92432份進(jìn)行分析, 現(xiàn)報(bào)告如下。

1 資料與方法

1. 1 一般資料 選取本院2009年1月~2012年12月無(wú)償獻(xiàn)血標(biāo)本92432份, 其中應(yīng)用核酸檢測(cè)標(biāo)本34440份。確保采集血液標(biāo)本后每個(gè)獻(xiàn)血者均及時(shí)留取4管標(biāo)本;在對(duì)酶免4項(xiàng)、ALT予以檢測(cè)時(shí)可選用分離膠促凝真空采血管;核酸測(cè)定時(shí)則選擇帶分離膠EDTA-K2抗凝真空采血管;對(duì)血型進(jìn)行測(cè)定時(shí)選取EDTA-K2抗凝真空采血管, 將具體的采集日期、樣品編碼等基礎(chǔ)信息進(jìn)行準(zhǔn)確記錄。得到的標(biāo)本需標(biāo)準(zhǔn)均在2 h內(nèi)進(jìn)行離心處理存至2~8℃冰箱內(nèi)。2~3 h內(nèi)送至檢測(cè)中心離心保存, 24 h內(nèi)血清學(xué)篩查并實(shí)施NAT檢測(cè)。

1. 2 方法 ELISA檢測(cè):所得到的每份獻(xiàn)血標(biāo)本在完成HBsAg檢測(cè)過程中均需予以2種ELISA試劑, 每批實(shí)驗(yàn)需具有室內(nèi)質(zhì)控品組、空白對(duì)照組、陰性對(duì)照組和陽(yáng)性對(duì)照組。對(duì)結(jié)果進(jìn)行判斷的標(biāo)準(zhǔn)為:S/CO≥1屬于陽(yáng)性(此狀態(tài)的血液檢測(cè)結(jié)果不符合標(biāo)準(zhǔn)), 0.5

核酸檢測(cè):以混樣方法對(duì)核酸予以檢測(cè)。每級(jí)混樣池均有6個(gè)標(biāo)本, 且均設(shè)定內(nèi)對(duì)照。將混合所測(cè)定陰性定作陰性, 將混合測(cè)定呈現(xiàn)陽(yáng)性者予以拆分檢測(cè), 當(dāng)拆分檢測(cè)呈現(xiàn)陰性時(shí)屬于NAT陰性, 當(dāng)拆分測(cè)定呈現(xiàn)陽(yáng)性時(shí)則屬于NAT陽(yáng)性。

在所有核酸篩查時(shí), 當(dāng)標(biāo)本呈現(xiàn)陽(yáng)性時(shí), 核酸為陽(yáng)性但經(jīng)“二對(duì)半”測(cè)定屬陰性, 且核酸出現(xiàn)陰性獻(xiàn)血者予以追蹤隨訪, 持續(xù)2個(gè)月后重新采樣, 分別予以HBV-DNA和“兩對(duì)半”檢測(cè)。

2 結(jié)果

在本文所選取的92432份血液標(biāo)本中, 進(jìn)行血清學(xué)測(cè)定, 標(biāo)本屬于HBsAg陰性者有92082份, 標(biāo)本屬于單試劑陽(yáng)性者有30份, 標(biāo)本屬于雙試劑陽(yáng)性者有320份。

予以核酸測(cè)定標(biāo)本共有34440份, 其中包括34430標(biāo)本予以HBsAg酶免檢測(cè)呈現(xiàn)陰性, 10份標(biāo)本予以單試劑測(cè)定呈現(xiàn)陽(yáng)性。在34440份標(biāo)本中, 核酸篩查呈現(xiàn)陽(yáng)性者52份, 通過核酸測(cè)定呈現(xiàn)陽(yáng)性者38份, HBsAg測(cè)定呈現(xiàn)陽(yáng)性者2份, 如表1所示, 陽(yáng)性檢出率與陽(yáng)性確認(rèn)率有15.1/萬(wàn)(52/34440)、11.6/萬(wàn)(40/34440)。在所認(rèn)定的呈現(xiàn)陽(yáng)性40份標(biāo)本內(nèi), 只有10份標(biāo)本經(jīng)HBsAg測(cè)定呈現(xiàn)單陽(yáng), 予以核酸篩查呈現(xiàn)陽(yáng)性, 對(duì)HBVELISA漏檢率進(jìn)行計(jì)算得到8.7/萬(wàn)(30/34440)。另14份標(biāo)本通過核酸篩查發(fā)現(xiàn)其均呈現(xiàn)陽(yáng)性, 經(jīng)HBsAg篩查及乙肝“兩對(duì)半”測(cè)定屬于陰性。

核酸篩查呈現(xiàn)陽(yáng)性的52份標(biāo)本, 將其中符合條件的26份實(shí)施追蹤檢測(cè), 其中12份通過核酸篩查顯示屬于陽(yáng)性, 經(jīng)乙肝“兩對(duì)半”測(cè)定則呈現(xiàn)陰性, 14份標(biāo)本經(jīng)核酸檢測(cè)呈現(xiàn)陰性。經(jīng)追蹤檢測(cè)發(fā)現(xiàn), 12份乙肝“兩對(duì)半”起始檢測(cè)呈現(xiàn)陰性標(biāo)本, 經(jīng)隨訪HBV-DNA(+)、HBsAg(+)8例, NAT對(duì)HBV酶免窗口期標(biāo)本檢出率2.32/萬(wàn)(8/34440), 隨訪HBsAg(-)4例, 為隱匿性HBV感染(OBI);14份核酸測(cè)定屬于陰性, 隨訪過程中發(fā)現(xiàn)6例病毒載量低于20 IU/ml, 4例 HBsAg一直呈現(xiàn)陰性, 屬于OBI。經(jīng)計(jì)算發(fā)現(xiàn)8例OBI, NAT對(duì)OBI檢出率2.32/萬(wàn)(8/34440)。

3 討論

輸血是否具有安全性主要風(fēng)險(xiǎn)在于被篩查病毒所處在的“窗口期”。有研究資料發(fā)現(xiàn), 經(jīng)NAT檢測(cè), 能夠減少HBV、HCV、HIV的EIA“窗口期”, 減少率達(dá)到40%~75%, 使得病毒經(jīng)輸血傳播風(fēng)險(xiǎn)幾率大范圍降低。在本文研究中, 追蹤隨訪ELISA法檢測(cè)呈現(xiàn)陰性但核酸陽(yáng)性者, 有8例標(biāo)本HBsAg ELISA測(cè)定陰性轉(zhuǎn)化成陽(yáng)性, 由此可知此血樣于ELISA窗口期予以NAT檢測(cè)時(shí)被發(fā)現(xiàn)的, 而且NAT測(cè)定表明有4例屬于隱匿性HBV感染患者, 說明NAT檢測(cè)對(duì)血液篩查具有重要意義[2]。

NAT檢測(cè)在應(yīng)用中, 所使用的試劑必須具有較高的靈敏性、特異性, 且實(shí)驗(yàn)環(huán)境具有較高要求, 和EIA檢測(cè)相對(duì)比更具有嚴(yán)格性, 在檢查中應(yīng)用所需設(shè)備、試劑往往會(huì)提高血液檢測(cè)成本。而且核酸篩查存在局限性, 在病毒載量較低情況下, 通常NAT難以檢測(cè)出, 在本文研究中, 6標(biāo)本予以核酸篩查呈現(xiàn)陽(yáng)性, 但是應(yīng)用核酸測(cè)定則屬于陰性, 追蹤檢測(cè)過程中發(fā)現(xiàn)病毒載量低于20 IU/ml[3]。

總之, NAT可以縮減“窗口期”, 減少病毒通過輸血途徑傳播風(fēng)險(xiǎn)性, 但是也會(huì)有漏檢標(biāo)本出現(xiàn)。NAT檢測(cè)時(shí)所關(guān)注的是病毒核酸, 而ELISA檢測(cè)則為抗原或抗體, 兩者所應(yīng)用的檢測(cè)原理和檢測(cè)方法均有差異性, 所以兩個(gè)方法在檢測(cè)血液標(biāo)本過程中并不存在重復(fù)性, 卻有一定的互補(bǔ)性, 屬于血液篩查檢測(cè)重要方法。

參考文獻(xiàn)

[1] 何亞琴, 徐立, 楊愛龍.核酸檢測(cè)在篩查獻(xiàn)血者乙型肝炎病毒中的應(yīng)用.中國(guó)輸血雜志, 2013, 26(3):147-148.

核酸檢測(cè)情況范文第2篇

現(xiàn)在離開遵義需要核酸檢測(cè)嗎1月

目前看是不需要的,畢竟當(dāng)下遵義是低風(fēng)險(xiǎn)區(qū),不好過由于各地方的規(guī)定不一樣,所以建議大家出行前像你要到達(dá)的目的地進(jìn)行咨詢。有問題的話可打目的城市公共衛(wèi)生客服熱線(當(dāng)?shù)貐^(qū)號(hào))-12320、抑或當(dāng)?shù)厥忻駸峋€電話(當(dāng)?shù)貐^(qū)號(hào))-12345了解詳情。

遵義現(xiàn)在限不限制出入

遵義現(xiàn)在不限制出入但前提是你是低風(fēng)險(xiǎn)區(qū)的,假使你從中高風(fēng)險(xiǎn)區(qū)域到遵義,需不需要核酸檢驗(yàn)和隔離,就要視遵義的防控措施而定,一般情況下,可能提供7天內(nèi)核酸檢測(cè)陰性證明就可以通過,也可能要核酸檢驗(yàn)還要隔離14天。假使你從低風(fēng)險(xiǎn)區(qū)去到遵義,通常能直接進(jìn)入,不用核酸檢驗(yàn)、隔離。建議打遵義公共衛(wèi)生客服電話0852-12320、或當(dāng)?shù)厥忻駸峋€0852-12345了解詳情。

離開遵義要準(zhǔn)備哪些

核酸檢測(cè)情況范文第3篇

1.1檢測(cè)方法及判定規(guī)則305912份全血標(biāo)本和單采血小板標(biāo)本進(jìn)行常規(guī)ELISA檢測(cè)。部分標(biāo)本由于ELISA檢測(cè)項(xiàng)目不合格直接被淘汰而未進(jìn)入到核酸檢測(cè)環(huán)節(jié),有303616份標(biāo)本分別進(jìn)行混樣核酸檢測(cè)(191222人份)和單人份核酸檢測(cè)(112394人份)。⑴混樣核酸檢測(cè):按照試劑盒說明書要求,篩選ELISA檢測(cè)合格標(biāo)本進(jìn)行8個(gè)標(biāo)本混樣核酸檢測(cè),無(wú)反應(yīng)性pooling的8個(gè)標(biāo)本視為該項(xiàng)目核酸檢測(cè)合格,有反應(yīng)性pooling進(jìn)行標(biāo)本的拆分單檢,拆分無(wú)反應(yīng)性的標(biāo)本判為合格,拆分亦有反應(yīng)性的標(biāo)本判為該項(xiàng)目核酸檢測(cè)不合格。⑵單人份核酸檢測(cè):采用單個(gè)標(biāo)本核酸檢測(cè)模式,按照試劑盒和全自動(dòng)核酸檢測(cè)設(shè)備要求進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)無(wú)反應(yīng)性的標(biāo)本視為HBVDNA、HCVRNA、HIV-1RNA項(xiàng)目聯(lián)檢合格,檢測(cè)有反應(yīng)性的標(biāo)本則視為HBVDNA、HCVRNA、HIV-1RNA項(xiàng)目聯(lián)檢不合格。

1.2統(tǒng)計(jì)學(xué)處理采用x²檢驗(yàn),比較各項(xiàng)目不合格率的差異,p<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2結(jié)果

2.1單檢模式及混檢模式下的NAT結(jié)果303616人份標(biāo)本進(jìn)行核酸檢測(cè),其中112394人份采用單人份核酸檢測(cè)系統(tǒng)進(jìn)行檢測(cè),檢出單獨(dú)NAT不合格數(shù)148例,不合格率為1.32‰;191222人份標(biāo)本采用另外的混樣核酸檢測(cè)系統(tǒng)進(jìn)行檢測(cè),檢出單獨(dú)NAT不合格數(shù)63例,不合格率為0.33‰.兩者不合格率比較,有顯著性差異(P<0.05)。

2.2全血標(biāo)本和單采血小板標(biāo)本ELISA檢測(cè)結(jié)果305912份全血標(biāo)本和單采血小板標(biāo)本中,采用ELISA方法檢測(cè)全血標(biāo)本278214人份,HBsAg、抗-HCV、抗-HIV-1/2三項(xiàng)不合格數(shù)2536例,不合格率為9.1‰;采用ELISA方法檢測(cè)單采血小板標(biāo)本27698人份,HBsAg、抗-HCV、抗-HIV-1/2三項(xiàng)不合格數(shù)78例,不合格率為2.8‰.兩者不合格率比較,有顯著性差異(P<0.05)。

2.3全血標(biāo)本和單采血小板標(biāo)本NAT檢測(cè)結(jié)果NAT不合格結(jié)果包括兩類,一類為NAT反應(yīng)性而ELISA無(wú)反應(yīng)性,即為單獨(dú)NAT不合格結(jié)果,此類不合格的檢出即為NAT在血液篩查中所發(fā)揮的檢測(cè)效能。另一類為NAT反應(yīng)性ELISA亦為反應(yīng)性。303616份標(biāo)本中全血標(biāo)本和單采血小板標(biāo)本中,276018人份全血標(biāo)本的單獨(dú)NAT不合格數(shù)186例,不合格率為0.67‰;27598人份單采血小板標(biāo)本的單獨(dú)NAT不合格數(shù)為26例,不合格率為0.94‰.兩者不合格率比較,無(wú)顯著性差異(P>0.05)。

3討論

確保臨床輸血的血液安全是血站工作的重心。目前,國(guó)內(nèi)已有多家血站采用ELISA+NAT方法進(jìn)行檢測(cè)的篩查策略。NAT技術(shù)具有高度特異性和敏感性,可以有效縮短ELISA檢測(cè)的“窗口期”,還可以避免因病毒變異、隱匿性感染等原因造成的ELISA方法的漏檢,在上世紀(jì)末,美歐日等國(guó)家血站已開展血液相關(guān)病毒核酸檢測(cè)。我國(guó)衛(wèi)生和計(jì)劃生育委員會(huì)于2010年6月開始對(duì)獻(xiàn)血者血液進(jìn)行HIV、HBV和HCV病毒核酸檢測(cè)的試點(diǎn),擬定2015年國(guó)內(nèi)血站全面實(shí)施核酸檢測(cè)技術(shù)。由于NAT檢測(cè)技術(shù)對(duì)實(shí)驗(yàn)操作的各個(gè)環(huán)節(jié)和實(shí)驗(yàn)室環(huán)境等都有很高的要求,因此NAT實(shí)驗(yàn)室質(zhì)量管理水平的高低直接關(guān)系到這項(xiàng)技術(shù)的實(shí)際應(yīng)用效果。如何根據(jù)自身實(shí)驗(yàn)室的情況建立適宜的檢測(cè)模式,不斷改進(jìn)以提高檢測(cè)效能,既防止漏檢,又最大限度降低由于NAT假陽(yáng)性而導(dǎo)致的血液淘汰是今后我們需要認(rèn)真探討的問題[9]。本中心作為首批參評(píng)的試點(diǎn)單位,自2010年6月對(duì)獻(xiàn)血者血液常規(guī)開展NAT檢測(cè),在此期間我們將全血標(biāo)本和單采血小板標(biāo)本的血液檢測(cè)模式進(jìn)行了優(yōu)化,將NAT檢測(cè)技術(shù)應(yīng)用于不同獻(xiàn)血人群的血液篩查在一定程度上提高了檢測(cè)效能。

本中心自2013年1月-2014年10月間采用單檢模式進(jìn)行標(biāo)本的核酸檢測(cè),NAT不合格率為1.32‰,明顯高于同期采用混樣核酸檢測(cè)系統(tǒng)所得到的0.33‰NAT不合格率。由于檢測(cè)系統(tǒng)不同、檢測(cè)模式的差異,導(dǎo)致其檢測(cè)靈敏度不同、檢出率也不同。對(duì)于混樣核酸檢測(cè)系統(tǒng)而言,pooling的方式勢(shì)必有稀釋標(biāo)本的作用,其檢測(cè)靈敏度也一定低于試劑說明書所提供的檢測(cè)靈敏度。單人份核酸檢測(cè)系統(tǒng)的檢測(cè)靈敏度高于混樣核酸檢測(cè)系統(tǒng),其檢出率也相對(duì)較高,因此,NAT檢測(cè)效能的影響因素與所采用的檢測(cè)模式、檢測(cè)靈敏度有關(guān)。在單采血小板的標(biāo)本中,HBsAg、抗-HCV、抗-HIV1/2三項(xiàng)ELISA檢測(cè)不合格率為2.8‰(79/27698),明顯低于同期全血標(biāo)本9.1‰(2536/278214)的不合格率。由于我中心單采血小板捐獻(xiàn)者85%以上來自于重復(fù)獻(xiàn)血者,受過更多的血液安全教育,每次獻(xiàn)血都進(jìn)行體檢和檢測(cè),也就是通常所說的“低危獻(xiàn)血人群”,傳播輸血傳染病的危險(xiǎn)性最小。而捐獻(xiàn)全血的重復(fù)獻(xiàn)血者占獻(xiàn)血人群比例不足50%。全血和單采血小板標(biāo)本均有單獨(dú)NAT不合格檢出,不合格率分別為0.67‰(186/276018)和0.94‰(26/27598)。由于病毒感染者“窗口期”獻(xiàn)血,病毒變異,免疫靜默感染等原因,導(dǎo)致單純抗原或抗體血清學(xué)檢測(cè)不能有效保障血液安全。NAT直接檢測(cè)病毒核酸,能顯著縮短血液感染病毒的檢測(cè)“窗口期”,與ELISA方法形成互補(bǔ),有效發(fā)揮其檢測(cè)效能。我國(guó)已將NAT血液篩查納入新的輸血技術(shù)操作規(guī)程。國(guó)內(nèi)多家采供血機(jī)構(gòu)將NAT技術(shù)應(yīng)用于獻(xiàn)血者的血液篩查中,均有不同程度HBsAg陰性而HBVDNA的陽(yáng)性檢出,從而發(fā)揮了NAT技術(shù)應(yīng)有的檢測(cè)效能。

核酸檢測(cè)情況范文第4篇

關(guān)鍵詞:生物技術(shù);食品檢測(cè);應(yīng)用

中圖分類號(hào):TS207.3 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A

1.FTA-PCR的技術(shù)

FTAR 卡屬于特制的棉纖維卡片, 主要通過螯合劑與強(qiáng)力的變性劑共同浸泡,其纖維基質(zhì)中包含化學(xué)物質(zhì),一旦FTAR捕捉細(xì)胞,石炭酸、EDTA以及SDS會(huì)自動(dòng)地把細(xì)胞裂解,而聚丙烯酰胺會(huì)結(jié)合核酸,確保樣品中的DNA具有穩(wěn)定性,同時(shí)確保核酸不會(huì)受到紫外線、核酸以及氧化劑破壞,還有利于其他微生物以及細(xì)菌生長(zhǎng)。該種方式不僅可以直接提取DNA,而且所提取的DNA能夠于室溫下保存,給PCR檢測(cè)創(chuàng)造了條件。在食品檢測(cè)中,采用FTA-PCR方法,有著明顯優(yōu)勢(shì)。Robert使用FTA卡來提取流感病毒RNA,聯(lián)合PCR的技術(shù)檢測(cè)流感病毒。李偉昊使用FTA卡與PCR方式相結(jié)合,提取以及檢測(cè)鮮肉中的沙門氏菌,從雞肉、豬肉、羊肉與牛肉勻漿液中實(shí)際檢出限大約70CFU/mL,能夠在六小時(shí)以內(nèi)結(jié)束肉中的沙門氏菌檢測(cè),現(xiàn)階段主要使用先增菌PCR的檢測(cè)方法可以節(jié)省時(shí)間12~24小時(shí),和GB/T 4789.4-2003的方式比起來,用這種方式檢測(cè),所用時(shí)間與檢出率效果都比較好[1]。

2.環(huán)介導(dǎo)的等溫?cái)U(kuò)增術(shù)(LAMP)

環(huán)介導(dǎo)的等溫?cái)U(kuò)增術(shù)屬于恒溫核酸的擴(kuò)增方式,主要是針對(duì)基因四種特異的引物以及六個(gè)區(qū)域的設(shè)計(jì),在常規(guī)水浴的條件下,即在65℃條件下一個(gè)小時(shí),就能夠結(jié)束核酸擴(kuò)增反應(yīng);和普通PCR比起來,無(wú)需紫外觀察、模板熱變性以及溫度循環(huán)等過程。完成擴(kuò)增以后,可以按照管內(nèi)的沉淀情況對(duì)結(jié)果進(jìn)行評(píng)估。由于這種技術(shù)操作比較便利以及靈敏度比較高,所以廣泛應(yīng)用于食品檢測(cè)中。聞偉剛[2]使用RT-LAMP技術(shù)構(gòu)建了具有特異、快速以及靈敏特征的菜豆莢中斑駁病毒檢驗(yàn)方式,用這種方式檢測(cè)的靈敏度比病毒的稀釋液高出3~10倍,與常規(guī)RT-PCR 檢測(cè)方式相比,靈敏度提高1000多倍。徐芊采用LAMP技術(shù)檢測(cè)水產(chǎn)品副溶血弧菌,只需一個(gè)小時(shí)就可以結(jié)束檢測(cè),并且檢測(cè)限高達(dá)89CFU/g,與常規(guī)PCR的檢測(cè)方式相比,縮短將近1/2的時(shí)間。易海華研發(fā)出志賀菌LAMP檢測(cè)方式,在一個(gè)小時(shí)以內(nèi)可以結(jié)束檢測(cè),每微升檢測(cè)限高達(dá)200拷貝。LAMP 是恒溫?cái)U(kuò)增的反應(yīng)之一,可以縮短普通PCR的反應(yīng)升降溫耗具體時(shí)間,并且能夠通過肉眼看到檢測(cè)結(jié)果,通常在0.5~1小時(shí)內(nèi)結(jié)束反應(yīng)過程,所以在食品檢測(cè)中有著明顯優(yōu)勢(shì)。然而由于LAMP的方式對(duì)實(shí)驗(yàn)技術(shù)者與實(shí)驗(yàn)環(huán)境方面有著較高要求,未達(dá)到相關(guān)要求時(shí)容易出現(xiàn)假陽(yáng)性問題,還需要深入研究,不斷地對(duì)這種檢測(cè)技術(shù)進(jìn)行完善。

3.核酸探針技術(shù)

核酸探針能夠促進(jìn)單鏈核酸的配對(duì),然后構(gòu)成雙鏈,通過標(biāo)記物對(duì)信號(hào)進(jìn)行釋放,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)檢測(cè)的目的。在核酸樣品的基因序列檢測(cè)中用核酸探針檢測(cè),由于病原體具備特異性核酸序列的片段,通過標(biāo)記技術(shù)與分離手段,可以把特定片段研制為核酸探針,并用在病原體的檢測(cè)以及疾病診斷中。在病原微生物中應(yīng)用核酸探針,可以鑒別高相似度基因的寄生蟲與毒株。Malic通過核酸探針的原味雜交方式,檢測(cè)與檢定球狀、銅綠假單細(xì)胞、金黃色葡萄球菌與鏈球細(xì)菌屬,經(jīng)檢測(cè)得知銅綠假單胞菌侵染比較明顯,可以用于多項(xiàng)指標(biāo)檢測(cè)。Almeida使用核酸探針原位雜交方式檢測(cè)奶粉中阪崎腸桿菌,該方式特異性高達(dá)百分之百,即便存在其他混合菌類,檢出限仍達(dá)到1CFU/10g。Almeida應(yīng)用同種方式拓展樣品檢測(cè)的范圍,檢測(cè)了糞便、血液與供應(yīng)水中沙門氏菌,其檢出限達(dá)到1 CFU/10g(mL),實(shí)際檢測(cè)時(shí)間在20小時(shí)以內(nèi),與常規(guī)PCR檢測(cè)方式相比,其靈敏度大大提高。曲海娜使用核酸探針方式檢測(cè)動(dòng)物毛皮中耐β-內(nèi)酰胺病原菌,其檢出限為529pgDNA,與傳統(tǒng)的藥敏實(shí)驗(yàn)相比采用這種檢測(cè)方式可以降低檢測(cè)成本,將檢測(cè)周期縮短,提高食品檢測(cè)效果。鄒金峰研發(fā)出鴨圓環(huán)病毒核酸探針技術(shù),同時(shí)用于檢測(cè)中,最低檢出量約5pgDNA,和常規(guī)PCR技術(shù)比起來,采用這種方式可以規(guī)避假陰性、假陽(yáng)性發(fā)生的可能[3]。

4.基質(zhì)分子的印跡技術(shù)

基質(zhì)分子的印跡技術(shù)主要是應(yīng)用分子印記的方式,把包含分子大小、形狀識(shí)別空洞膜印記到載體或是基質(zhì)上,也就是把分子與載體印記到聚合物單體上。如2-乙烯基以及甲基的丙烯酸等,建立檢測(cè)靶與分子之間的鏈接鏈,使用電聚合、自組裝以及分子聚合和模板分子構(gòu)成相應(yīng)的配合物,然后添加交聯(lián)劑。例如,添加多元醇與有機(jī)二元酸交聯(lián)劑,然后在載體上構(gòu)成膜,再把模板的分子包裹于膜中,然后將膜內(nèi)的模板分子清除,將模板分子特異性的印記留下。因?yàn)樗纬捎∮洏?gòu)造和模板分子之間互補(bǔ),也就是只有印記和需檢測(cè)、分離分子形狀匹配時(shí),這種分子才可以占據(jù)印跡的空洞。而且因?yàn)橛≯E三維結(jié)構(gòu)中的一維屬于傳導(dǎo)載體,所以可以把該分子識(shí)別的過程快速、直接轉(zhuǎn)變?yōu)榭勺R(shí)別信號(hào)。而開始基質(zhì)分子的印記技術(shù)主要用于醫(yī)學(xué)臨床檢驗(yàn)如肌紅蛋白檢測(cè)中,目前逐漸應(yīng)用于抗生素的檢測(cè)中。Wang研制出分子的印跡技術(shù)膠質(zhì)晶體類模版,能夠?qū)Ψ涿叟c牛奶樣品中的金霉素、四環(huán)素、土霉素殘留進(jìn)行檢測(cè),其檢出限為0.04~0.24μmol/L。Shi把甲礬霉素作為模板,構(gòu)建了層析法分子印跡的固相萃取方式,可以對(duì)河蟹中的殘留氟苯尼考胺、氯霉素、氟苯尼考與甲礬霉素進(jìn)行檢測(cè),其檢出限分別為0.03μg/kg、0.02μg/kg,0.10μg/kg、0.09μg/kg,在一天以內(nèi)能夠結(jié)束全部檢測(cè)。分子的印跡技術(shù)的檢測(cè)限和色譜技術(shù)比較相似,但是其檢測(cè)的成本比色譜技術(shù)低,用該技術(shù)檢測(cè)產(chǎn)品時(shí),既可以用在食品檢測(cè)中,還可以用在食品現(xiàn)場(chǎng)的自檢中,檢測(cè)范圍主要包含殺蟲劑、真菌毒素以及細(xì)菌檢測(cè)等。

5.免疫層析技術(shù)

免疫層析技術(shù)是當(dāng)前興起的診斷與鑒別技術(shù),原理是某抗原特異性的抗體容易被熒光微粒、金粒子標(biāo)記,容易吸附于固相載體點(diǎn)樣的區(qū)域,并且同一種抗原的另一種特異性抗體會(huì)固定于固相載體另一端,一旦液體樣品浸入點(diǎn)樣的區(qū)域以后,已標(biāo)記樣品以及特異性的抗體容易在毛細(xì)血管的作用下沿固相的載體超前移動(dòng);如果樣品之中存在待檢的抗原,待檢的抗原就會(huì)和已標(biāo)記特異性的抗體結(jié)合,構(gòu)成相應(yīng)的復(fù)合物,復(fù)合物移至特異性的抗體區(qū)域時(shí),抗原部分容易破壞此處特異性的抗體。

6.生物的傳感器

生物的傳感器主要是通過固定化生物活性的物質(zhì),例如生物膜、酶、DNA、蛋白質(zhì)與微生物等,作為理化換能器以及敏感原件。換能器主要包括壓電晶體、氧電極、場(chǎng)效應(yīng)管以及光敏管,同時(shí)還可以構(gòu)成分析檢測(cè)的裝置,而待測(cè)的物質(zhì)經(jīng)過擴(kuò)散作用以后,會(huì)進(jìn)入分子中,對(duì)元件進(jìn)行識(shí)別,在識(shí)別的作用下,和分子識(shí)別的元件進(jìn)行結(jié)合,從而產(chǎn)生生物、化學(xué)反應(yīng)。

總而言之,生物技術(shù)具有高效、經(jīng)濟(jì)科學(xué)的特點(diǎn),在檢測(cè)食品的過程中,應(yīng)用生物檢測(cè)技術(shù),能夠提升檢測(cè)的精度以及提高檢測(cè)的速度,是現(xiàn)階段食品檢測(cè)領(lǐng)域的新型技術(shù),因此,食品檢測(cè)領(lǐng)域需要全面了解生物檢測(cè)技術(shù),盡可能從食品的檢測(cè)細(xì)節(jié)與工作著手,在食品檢測(cè)中應(yīng)用各種先進(jìn)檢測(cè)技術(shù),以確保食品檢測(cè)的安全性。

參考文獻(xiàn):

[1]姜思遠(yuǎn),郭明英,吳艷玲.生物技術(shù)在食品生產(chǎn)加工與檢測(cè)中的應(yīng)用[J].內(nèi)蒙古石油化工,2014,21(22).

核酸檢測(cè)情況范文第5篇

一、工作目標(biāo)

嚴(yán)守養(yǎng)老機(jī)構(gòu)疫情防控工作關(guān)口,堅(jiān)決做到新入住人員人人都開展核酸檢測(cè)。

二、工作內(nèi)容

(一)養(yǎng)老機(jī)構(gòu)在接收新入住人員前,必須通知入住人員或其親屬到市疾控中心進(jìn)行核酸檢測(cè)。在辦理入院手續(xù)時(shí),養(yǎng)老機(jī)構(gòu)必須將新入住人員24小時(shí)《核酸檢測(cè)報(bào)告(陰性)》備案到《入住人員檔案》,無(wú)報(bào)告或未放入檔案的均視為養(yǎng)老機(jī)構(gòu)違規(guī),嚴(yán)重的將依法予以封停。

(二)市民政局將對(duì)全市養(yǎng)老機(jī)構(gòu)開展此項(xiàng)工作的情況進(jìn)行督查,一旦發(fā)現(xiàn)未按要求,私自收住人員的,無(wú)論其是何種原因,取消以后3年的各種政策性補(bǔ)貼,并將該養(yǎng)老機(jī)構(gòu)存在的問題上報(bào)至市疫情防控工作領(lǐng)導(dǎo)小組,依法依規(guī)予以封停。

三、核酸檢測(cè)地址及聯(lián)系方式

地址:市疾病預(yù)防控制中心聯(lián)系方式:

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